ИЗУЧЕНИЕ ИЗМЕНЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ПЕЙЗАЖА ТОЛСТОЙ КИШКИ ПОД ВЛИЯНИЕМ ГЕННО-МОДИФИЦИРОВАННОГО ПРОДУКТА
Ключевые слова:
ГМО-соя, оқ зотсиз каламушлар, меъёрий микрофлора, дисбиозАннотация
Цель: Изучение влияния генно-модифицированого сои на нормальную микрофлору толстого кишечника экспериментальных животных.
Методы: Для достижения поставленной цели были набраны общее 90 белых безпородных крыс мужского пола, в массе 150-180 грамм и они разделены на 3 группы: 1-группа крысы, которые были в стандартном виварии, которые не получавшие с ГМ-ые или без ГМ-ые соей (n=30); 2-группа - безпородные крысы, которые были в стандартном виварии в рационе получавшие без ГМ-сои (n=30); 3-группа - безпородные крысы, которые были в стандартном виварии в рационе получавшие ГМ-соей (n=30). Чтобы определить влияние ГМ-сои были проведены бактериологические исследования толстой кишки белой безпородной крыс. В исследовании изучено 9 микроорганизмов из числа представителей микрофлоры толстой кишки.
Полученные результаты: Анализ полученных результатов показал, что симптомы дисбактериоза толстой кишки наблюдались в конце срока наблюдения у лабораторных животных, потреблявших ГМ-сою. Эта ситуация проявляется в следующем: показатель Bifidobacterium spp и Lactobacillus spp достоверно снижен в 2,43 и 3,05 раза у животных, употреблявших ГМ-сою по сравнению с интактными крысами, что интерпретировалось как первый элемент дисбиоза, сформировавшийся под влиянием ГМ-сои. У белых беспородных крыс, кормленных ГМ-соей, в отличие от интактных животных лактозонегативные Escherichia coli прорастали (у интактных животных не прорастали), соответственно лактозопозитивные Escherichia coli не прорастали, а все было наоборот у интактных животных. Доказано, что прорастание лактозонегативных штаммов, отсутствие лактозопозитивных штаммов является вторым элементом дисбиоза толстой кишки. В основной группе Enterobacter spp и Proteus spp увеличились в 4,54 и 3,75 раза соответственно по сравнению с контрольной группой, что оказалось третьим элементом дисбиоза толстой кишки. если представитель индигенной микрофлоры – непатогенные Streptococcus spp в основной группе достоверно снижались до 1,47 раза по сравнению с интактными лабораторными животными, то количественный показатель Staphylococcus spp достоверно увеличился до 1,50 раз. Это межгрупповое несоответствие было интерпретировано как четвертый элемент дисбиоза толстой кишки. Достоверное повышение количественного показателя Candida spp до 1,94 раза у белых беспородных крыс, кормленных ГМ-соей, по сравнению с не кормленными этим продуктом, указывается как пятый элемент дисбиоза толстой кишки. Было показано, что основным фактором, вызывающим это, является ГМ-сои.
Выводы: У 2-х из 9-ти исследованных микроорганизмов (Staphylococcus spp, Candida spp) межгрупповые различия не выявлены, они количественно были близки друг к другу. Если все 5 перечисленных элементов дисбиоза присутствовали у лабораторных животных, употреблявших ГМ-сою, то они явно не проявлялись у белых беспородных крыс, употреблявших не-ГМ сою. У интактных лабораторных животных (группа1) признаки дисбиоза отсутствуют, у животных, кормленных не-ГМ соей (группа 2) признаки дисбиоза слабо развиты (I степень дисбиоза), а у тех, кормленных ГМ-соей, признаки дисбиоза явно выражены (II степень дисбиоза). Такое положение объяснилась незнакомостью ГМ-сои в организма крыс, низкой резистентностью обоих исследуемых штаммов микроорганизмов к факторам внешней среды.
Библиографические ссылки
Алланазаров А.Х. Нуралиева Х.О. Ген-модификацияланган соянинг лаборатория ҳайвонлари иммун тизими кўрсаткичларига таъсирини қиёсий баҳолаш // Общество и инновации. - Ташкент, 2021. - №3. – С.413-422.
Лукашенко Т.М. Изменение веса тела крыс при потреблении сои // Материалы международной конференции «Сигнальные механизмы регуляции висцеральных функций». – Минск, 2007. – С.152.
Мухаммедов И.М. Клиник микробиология: шифокор-мутахассисларга лаборатор ташхис // Ўқув қўлланма. – Тошкент, 2016. -632б.
Нуралиев Н.А., Бектимиров А.М-Т., Алимова М.Т., Сувонов К.Ж. Правила и методы работы с лабораторными животными при экспериментальных микробиологических и иммунологических исследованиях // Методическое пособие. - Ташкент, 2016. - 33 с.
Собирова Д.Р., Нуралиев Н.А., Гинатуллина Е.Н. Результаты исследования мутагенной активности генно-модифицированного продукта в экспериментах на лабораторных животных // Безопасность здоровья человека. – Ярославль, 2017. - №1. - С.27-31.
Собирова Д.Р., Нуралиев Н.А., Носирова А.Р., Гинатуллина Е.Н. Изучение влияния генно-модифицированного продукта на репродукцию млекопитающих в экспериментах на лабораторных животных // Инфекция, иммунитет и фармакология. – Ташкент, 2017. - №2 – С.195-200.
Шеина Н.И. Оценка патогенных свойств генно-инженерно-модифицированных микроорганизмов как один из критериев их биобезопасности // Гигиена и санитария. - Москва, 2017. - №96(3). – С.284-286.
Avozmetov J.E. Influence of a Genetically Modified Organism on the rat’s hepatobiliary system // European journal of Molecular & Clinical Medicine. – 2020. - Volume 7, Issue 8. – P.1235-1237.
Angers-Loustau A., Petrillo M., Bonfini L., Gatto F., Sabrina R., Patak A., Kreysa J. JRC GMO-Matrix: a web application to support Genetically Modified Organisms detection strategies // BMC Bioinformatics. – 2014. - Vol. 15, N 1. – P.417.
Khasanova D.A. Effect of a genetically modified product on the morphological parameters of the rat’s spleen and thymus // European Journal of Molecular & Clinical Medicine. - Англия, 2020. - Vol. 7. - Issue 1.-Р. 3364-3370.
Nuraliyev N.A., Allanazarov A.Kh. Estimation and assessment of cytogenetic changes in bone marrow cells of laboratory animals received a gene-modified product // Annals of Romanian Society for Cell Biology. - 2021. - Vol. 25, Issue 1. - P.401-411.
